اثر کاربرد باکتری محرک رشد مولد بیوفیلم و اسید آمینه تریپتوفان بر عملکرد و غلظت کادمیوم در اندام‌هوایی گیاه چاودار

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 استادیار گروه علوم و مهندسی خاک، دانشکده کشاورزی، دانشگاه مراغه، مراغه

2 دانشجوی سابق کارشناسی ارشد گروه علوم و مهندسی خاک، دانشگاه مراغه

3 استاد گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه مراغه، مراغه

چکیده

با توجه به اجتناب‌ناپذیر بودن ورود عنصر کادمیوم به خاک­ها و سمیت این عنصر، لازم است که از ورود آنها به زنجیره غذایی به­ویژه از طریق جذب توسط گیاهان جلوگیری نمود، باکتری­های محرک رشد گیاهان با قابلیت تولید بیوفیلم و تولید اکسین می­توانند مانع ورود عناصر سنگین به اندام­های­هوایی گیاهان زراعی گردند. در این راستا آزمایشی در قالب طرح فاکتوریل بر پایه بلوک­های کامل تصادفی در چهار تکرار به روش هیدروپونیک طراحی و اجرا شد. فاکتورهای مورد مطالعه شامل سطوح کادمیوم (صفر، 50 و 100 میلی­گرم کادمیوم در لیتر)، مایه­زنی باکتریایی (مایه­زنی باکتری Bacillus atrophaeus 54-1 و عدم مایه­زنی) و سطوح تریپتوفان (عدم کاربرد و کاربرد با غلظت 100 میلی­گرم تریپتوفان در لیتر) بود. نتایج نشان دادند که افزودن تریپتوفان و مایه­زنی باکتریایی منجر به افزایش 19 درصدی عملکرد ماده‌ خشک چاودار در مقایسه با شاهد شد. همچنین، کاربرد تلفیقی تریپتوفان در غلظت­های 50 و 100 میلی­گرم در لیتر به­همراه مایه­زنی باکتریایی به­ترتیب سبب کاهش 100 و 62 درصدی غلظت کادمیوم در اندام­های­ هوایی چاودار گردید. کاربرد تریپتوفان میزان مالون­دی­آلدئید و پراکسید هیدروژن را در مقادیر 50 میلی­گرم کادمیوم بر لیتر به­ترتیب 30 و 42 درصد و در شرایط 100 میلی­گرم بر لیتر کادمیوم به میزان 34 و 32 درصد کاهش  داد که حاکی از بهبود سیستم آنتی­اکسیدانی چاودار در اثر کاربرد تریپتوفان می­باشد. لذا به نظر می­رسد با مطالعات تکمیلی­تر بتوان از این تیمارها جهت افزایش عملکرد و کاهش ورود کادمیوم به زنجیره غذایی از طریق گیاهان در شرایط خاک­های مبتلا به آلودگی کادمیوم بهره­برداری کرد.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


عنوان مقاله [English]

Effect of biofilm-forming plant growth promoting bacterium and tryptophan on yield and Cadmium uptake in Rye (Secale cereale)

نویسندگان [English]

  • Esmaeil Karimi 1
  • Shokofeh Mohammadi 2
  • Ezzatallah Esfandyari 3
1 Assistant Professor, Dept. of Soil Science, Faculty of Agriculture, University of Maragheh
2 MSc Student, Dept. of Soil Science, Faculty of Agriculture, University of Maragheh
3 Professor, Dept. of Agronomy and Plant Breeding, Faculty of Agriculture, University of Maragheh
چکیده [English]

Due to the inevitable entry of cadmium into the soils and its high toxicity, it is essential to prevent it from human food chains. Biofilm-forming plant growth-promoting bacteria with the ability of auxin production can prevent the transport of some heavy metals to plants. A hydroponic factorial experiment was designed based on a randomized complete block in three replications to investigate the effect of biofilm-forming plant growth-promoting bacterium and tryptophan on yield and cadmium uptake in Rye. Experimental factors include three levels of cadmium (zero, 50 and, 100 mg.L-1), two bacterial inoculation (with or without Bacillus atrophaeus) and, tryptophan (presence in 100 mgL-1 and absence). The results showed that the addition of tryptophan and bacterial inoculation could increase the yield of rye dry matter by 19% on average vs control. In addition, the co-applying of tryptophan with bacterial inoculation was able to reduce 100% and 62% of the cadmium concentration in rye aerial parts at 50 and 100 mg.L-1, respectively. The use of tryptophan by the improvement of the antioxidant system was able to reduce the amount of malondialdehyde and hydrogen peroxide at 50 mg.L-1 cadmium level up to 30 and 42%, and for 100 mg.L-1 cadmium by 34 and 32%, respectively. Therefore, it seems that with further studies, these treatments can be used to increase the yield and reduce the Cd entry into the food chain in the Cd-contaminated soils.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Bioconcentration factor
  • Catalase
  • Guaiacol peroxidase
  • Transfer factor
  1. کریمی، ا. علی­اصغرزاد، ن. نیشابوری م.ر و اسفندیاری. جداسازی، شناسایی مولکولی و ارزیابی ویژگی­های محرک رشدی باکتریهای تشکیل دهنده بیوفیلم از ریزوسفر گیاهان غیرزراعی در شمالغرب ایران. مجله تحقیقات کاربردی خاک7(2): 14-28
  2. Abedi, T. and Mojiri, A. 2020. Cadmium Uptake by Wheat (Triticum aestivum): An Overview. Plants 9: 1-14.
  3. Aebi, H. 1984. Catalase in vitro. Methods in Enzymology 105: 121-126.
  4. Ahemad, M. and Kibret, M. 2014. Mechanisms and applications of plant growth promoting rhizobacteria: current perspective. Journal of King Saud University Science 26:1–20.
  5. Amanifar, S. Aliasgharzad, N. Najafi, N. Oustan, S.H.and Bolandnazar, S. 2012. Effect of arbuscular mycorrhizal fungi on lead phytoremediation by sorghum (Sorghum bicolor L). Water and Soil Science 22(1): 155-170.
  6. Batool, T. Ali, S. Seleiman, M.F. Huma, N.N. and Ali, A. 2020. Plant growth promoting rhizobacteria alleviates drought stress in potato in response to suppressive oxidative stress and antioxidant enzymes activities. Scientific Reports 10: 16975.
  7. Bradford, M.M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical biochemistry 72(1-2): 248-254.
  8. Chen, J. Zhu, C. Lin, D. and Sun, Z.X. 2007. The effects of Cd on lipid peroxidation, hydrogen peroxide content and antioxidant enzyme activities in Cd-sensitive mutant rice seedlings. Canadian Journal of Plant Science 87(1) 49-57.
  9. DalCorso, G. Fasani, E. Manara, A. Visioli, G. and Furini, A. 2019. Heavy metal pollutions: state of the art and innovation in phytoremediation. International Journal of Molecular Science 20:3412.
  10. Desouza, R. Ambrosini, A. and Passaglia, L.M.P. 2015. Growth-promoting bacteria as inoculants in agricultural soils. Genetics and Molecular Biology 38(4):S1415.
  11. Etesami, H. Alikhani, H.A. Akbari, A.A. 2009. Evaluation of plant growth hormones production (IAA) ability by Iranian soils rhizobial strains and effects of superior strains application on wheat growth indexes. World Applied Science Journal 6(11): 1576-1584.
  12. Farooq, H. Asghar, H.N. Khan, M.Y. Saleem, M. and Zahir, Z.A. 2015. Auxin-mediated growth of rice in cadmium-contaminated soil. Turkish Journal of Agriculture and Foresty 39:272-276.
  13. Ghoochani, M. Rastkari, N. Yunesian, M. Nabizadeh, R. Mesdaghinia. A. Houshiarrad, A. Shamsipour, M. and Dehghani, M.H. 2018. What do we know about exposure of Iranians to cadmium? Findings from a systematic review. Environmental Science and Pollution Research 25, 1–11.
  14. Heath, R. L. and Packer, L. 1968. Photoperoxidation in isolated chloroplasts. Archives of Biochemistry and Biophysics 125: 189-198.
  15. Jan, R. Khan, M.A. Asaf, S. Lubna, N. Lee, I.J. and Kim, K.M. 2019. Metal Resistant Endophytic Bacteria Reduces Cadmium, Nickel Toxicity, and Enhances Expression of Metal Stress Related Genes with Improved Growth of Oryza Sativa, via Regulating Its Antioxidant Machinery and Endogenous Hormones. Plant 8: 363.
  16. Khanna, K. Jamwal, V.L. Gandhi, S.G. Ohri, P. and Bhardwaj, R. 2019. Metal resistant PGPR lowered Cd uptake and expression of metal transporter genes with improved growth and photosynthetic pigments in Lycopersicon esculentum under metal toxicity Scientific Reports 9: 5855.
  17. Lakzian, A. Berenji A.R. Karimi E. and Razavi, S. 2008. Adsorption Capability of Lead, Nickel and Zinc by Exopolysaccharide and Dried Cell of Ensifer meliloti. Asian Journal of Chemistry 20(8): 6075-6080
  18. Liphadzi, M.S. Kirkham, M.B. and Paulsen, G.M. 2006. Auxin-enhanced root growth for phytoremediation of sewage-sludge amended soil. Environmental Technology 27:695-704.
  19. Moe, L.A. 2013. Amino acids in the rhizosphere: From plants to microbes. American Journal of Botany 100: 1692–1705.
  20. Mustafa, A, Imran, M. Ashraf, M. and Mahmood, K. 2018. Perspectives of using L-tryptophan for improving productivity of agricultural crops: A review. Pedosphere 28(1): 16–34.
  21. Ostonen, U. Tsepp, P.U. and Biel, C. 2007. Specific root length as an indicator of environmental change. Plant Biosystems 141 (3): 426-442.
  22. Rajkumar, M. Ma, Y. and Freitas, H. 2013. Improvement of Ni phytostabilization by inoculation of Ni resistant Bacillus megaterium Journal Environmental Management 128: 973–980.
  23. Raza, A. Habib, M. Kakavand, S.N. Zahid, Z. Zahra, N. Sharif, R. Hasanuzzaman, M. 2020. Phytoremediation of Cadmium: Physiological, Biochemical, and Molecular Mechanisms. Biology 9(7):177.
  24. Rehman, M.Z.U. Zafar, M. Waris, A.A. Rizwan, M. Ali, S. Sabir, M. Usman, M. Ayub, M.A., Ahmad, Z. 2020. Residual effects of frequently available organic amendments on cadmium bioavailability and accumulation in wheat. Chemosphere 244:125548.
  25. Sairam, R., Veerabhadra K. R. and Srivastava, G.C. 2002. Differential response of wheat genotypes to long term salinity stress in relation to oxidative stress, antioxidant activity and osmolyte concentration. Plant Science 163: 1037-1046.
  26. Sella, S.R., Vandenberghe, L.P. and Soccol, C.R. 2015. Bacillus atrophaeus: Main characteristics and biotechnological applications—A review. Critical Reviews in Biotechnology 35: 533–545.
  27. Sergiev, I. Alexieva, V. and Karanov, E. 1997. Effect of spermine, atrazine and combination between them on some endogenous protective systems and stress markers in plants. Comptes Rendus Academic Bulgare Science 51: 121-124.
  28. Srivastava, S. Chiappetta, A. and Beatrice, M. 2013. Identification and profiling of arsenic stress-induced miRNAs in Brassica juncea. Journal of Experimental Botany 64:303-315.
  29. Stoodley, P. Sauer, K. Davies, D.G. and Costerton, J.W. 2002. Biofilms as complex differentiated communities. Annual Reviews of Microbiology 56:187–209.
  30. Tang, W. and Newton, R.J. 2005. Polyamines reduce salt-induced oxidative damage by increasing the activities of antioxidant enzymes and decreasing lipid peroxidation in Virginia pine. Plant Growth Regulation 46(2): 31-43.
  31. Verbruggen, N. Hermans, C. and Schat, H. 2009. Mechanisms to cope with arsenic or cadmium excess in plants. Current Opinion in Plant Biology 12(3):364-72.
  32. Yan, A., Wang, Y., Swee N.T. Lokman, M.Y.M. Ghosh, S. and Chen1, Z. 2020. Phytoremediation: A Promising Approach for Revegetation of Heavy Metal-Polluted Land. Frontier in Plant Science
  33. Younesi, O. and Moradi, A. 2014. Effects of plant growth-promoting rhizobacterium (PGPR) and arbuscular mycorrhizal fungus (AMF) on antioxidant enzyme activities in salt-stressed bean (Phaseolus vulgaris). Agriculture 60(1): 10-21.
  34. Zhang, H.H. Tang, M. Chen, H. Zheng, C.L. and Niu, Z.C. 2010. Effect of inoculation with AM fungi on lead uptake, translocation and stress alleviation of Zea mays seedlings planting in soil with increasing lead concentrations. European Journal of Soil Biology 46(5): 306-311.